一、培养物的不良表现及改良措施(初始培养阶段)

　　1.培养物水浸状、变色、坏死、茎断面附近干枯

　　可能原因：表面杀菌剂过量，消毒时间过长，外植体选用不当（部位或时期）。

　　改进措施：调换其他杀菌剂或降低浓度，缩短消毒时间，试用其他部位，生长初期取材。

　　2.培养物长期培养几乎无反应

　　可能原因：基本培养基不适宜，生长素不当或用量不足，温度不适宜。

　　改进措施：更换基本培养基或调整培养基成分，尤其是调整盐离子浓度，增加生长素用量，试用2,4-D，调整培养温度。

　　3.愈伤组织生长过旺、疏松，后期水浸状

　　可能原因：激素过量，温度偏高，无机盐含量不当。

　　改进措施：减少激素用量，适当降低培养温度，调整无机盐（尤其是铵盐）含量，适当提高琼脂用量增加培养基硬度。

　　4.愈伤组织太紧密、平滑或突起，粗厚，生长缓慢

　　可能原因：细胞分裂素用量过多，糖浓度过高，生长素过量。

　　改进措施：减少细胞分裂素用量，调整细胞分裂素与生长素比例，降低糖浓度。

　　5.侧芽不萌发,皮层过于膨大,皮孔长出愈伤组织

　　可能原因:枝条过嫩,生长素、细胞分裂素用量过多。

　　改进措施：减少激素用量，采用较老化枝条。

　　二、培养物的不良表现及改良措施(继代培养阶段)

　　1.苗分化数量少、速度慢、分枝少、个别苗生长细高

　　可能原因：细胞分裂素用量不足，温度偏高，光照不足。

　　改进措施：增加细胞分裂素用量，适当降低温度，改善光照，改单芽继代为团块（丛芽）继代。

　　2.苗分化过多，生长慢，有畸形苗，节间极短，苗丛密集，微型化

　　可能原因：细胞分裂素用量过多，温度不适宜。

　　改进措施：减少或停用细胞分裂素一段时间，调节温度。

　　3.分化率低,畸形,培养时间长时苗再次愈伤组织化

　　可能原因:生长素用量偏高,温度偏高。

　　改进措施：减少生长素用量，适当降温。

　　4.叶粗厚变脆

　　可能原因：生长素用量偏高，或兼有细胞分裂素用量偏高。

　　改进措施：适当减少激素用量，避免叶片接触培养基。

　　5.再生苗的叶缘、叶面等外偶有不定芽分化出来

　　可能原因：细胞分裂素用量偏高，或表明该种植物适于该种再生方式。

　　改进措施：适当减少细胞分裂素用量，或分阶段地利用这一再生方式。

　　6.丛生苗过于细弱，不适于生根或移栽

　　可能原因：细胞分裂素浓度过高或赤霉素使用不当，温度过高，光照短，光强不足，久不转移，生长空间窄。

　　改进措施：减少细胞分裂素用量，免用赤霉素，延长光照时间，增强光照，及时转接，降低接种密度，更换封瓶纸的种类。

　　7.幼苗淡绿，部分失绿

　　可能原因：无机盐含量不足，PH值不适宜，铁、锰、镁等缺少或比例失调，光照、温度不适。

　　改进措施：针对营养元素亏缺情况调整培养基，调好PH值，调控温度、光照。

　　8.幼苗生长无力、发黄落叶、有黄叶、死苗夹于丛生苗中

　　可能原因：瓶内气体状况恶化，PH值变化过大，久不转接导致糖已耗尽，营养元素亏缺失调，温度不适，激素配比不当。

　　改进措施：及时转接、降低接种密度，调整激素配比和营养元素浓度，改善瓶内气体状况，控制温度。

　　三、培养物的不良表现及改良措施(生根阶段)

　　1.培养物久不生根，基部切口没有适宜的愈伤组织

　　可能原因：生长素种类、用量不适宜；生根部位勇气不良；生根程序不当；PH值不适，无机盐浓度及配比不当。

　　改进措施：改进培养程序，选用适宜的生长素或增加生长素用量，适当降低无机盐浓度，改用滤纸桥液培养生根等。

　　2.愈伤组织生长过快、过大，根茎部肿胀或畸形，几条根并联或愈合。

　　可能原因：生长素种类不适，用量过高，或伴有细胞分裂素用量过高，生根诱导培养程序不对。

　　改进措施：调换生长素种类或几种生长素配合使用，降低使用浓度，附加VB2或PG等减少愈伤，改变生根培养程序等。